Solutions de photométrie à fibre
La technique
La photométrie par fibres est une technique de neuro-imagerie qui surveille l'activité neuronale chez les animaux en mouvement libre Cette technique utilise des indicateurs fluorescents codés génétiquement (par exemple GCaMP, dLight, GRAB-Ach, RCaMP, jRGECO1) exprimés dans des régions cérébrales cibles. Ces indicateurs ne deviennent fluorescents que lorsqu'ils sont liés à des molécules telles que le calcium, la dopamine ou l'acétylcholine. L'implantation d'une fibre optique dans le cerveau permet d'exciter ces indicateurs et de recueillir le signal d'émission de fluorescence. dynamique moléculaire en temps réel lors de comportements complexes.
Ainsi, contrairement au dorique Miniscopes, qui résolvent l'activité unicellulaire, la photométrie des fibres enregistre les signaux de population (c.-à-d. la fluorescence globale des neurones marqués). Cette approche est idéale pour les études au niveau des circuits neuronaux, notamment celles portant sur des régions cérébrales profondes comme l'amygdale, l'hypothalamus, le noyau accumbens, le pont, etc. En implantant de multiples fibres dans différents noyaux interconnectés, les scientifiques peuvent étudier les modifications des circuits neuronaux lors de comportements, d'apprentissages, de troubles de la mémoire, d'addictions, de troubles alimentaires et d'anxiété.
L'approche de photométrie par fibre optique offre plusieurs avantages au-dessus du miniscope :
- Minimale invasive (surtout pour les régions profondes du cerveau)
- Optimisé pour les expériences multi-animaux et multi-sites
- Solution économique
Systèmes de photométrie à fibres
Lentilles Doric Inc. est un reconnu leader en photométrie des fibres optiques avancée Des solutions pour le comportement des animaux, moteurs d'innovation dans ce domaine en constante évolution.
Tous Doric Le système de photométrie par fibre optique est complet. plug-and-play solution. Nous fournissons tout le nécessaire, des canules aux patchs de fibres optiques, en passant par les joints rotatifs, les cubes optiques, les sources lumineuses, les consoles et les logiciels d'acquisition de données. logiciel d'analyse.
Des animaux en liberté de mouvement à long terme aux capacités optogénétiques, en passant par les technologies sans fil et multifibres, chaque système a été soigneusement conçu pour répondre aux besoins spécifiques. besoins et défis expérimentaux spécifiques.
Les trois principaux types de systèmes de photométrie à fibres optiques sont classés en catégories selon le type de détecteur.:
- DE BASE: photodétecteur à haute sensibilité et haute résolution temporelle (FMC, RFMC et WiFP)
- IMAGE DE GROUPE : La caméra CMOS capture simultanément des images de plusieurs fibres (BFMC, BFTO, RBFMC).
- DURÉE DE VIE: Le photodétecteur rapide mesure les variations de la durée de vie de la fluorescence à l'échelle de la picoseconde (FluoPulse™).
Produits en vedette
FluoPulse™
Au-delà de l'intensité, mesurez la durée de vie.
Quantifier la dynamique tonique, la dynamique de base relative et la dynamique de l'état lent via changements en picosecondes en durée de vie de la fluorescence, chez les animaux en liberté.
système sans fil
Une solution sans fil pour les expériences nécessitant Plusieurs animaux interagissant. Idéal pour enregistrer/manipuler les populations neuronales sous-jacentes comportements sociaux.
Système d'imagerie de faisceaux rotatifs
Une puissance élevée, multicolore source lumineuse pour la plupart des opsines disponibles sur le marché.
Photométrie à fibre
Ce comparaison côte à côte met en évidence les différences de configuration des canaux, le nombre maximal de sites/animaux, la compatibilité bicolore et optogénétique, et les fonctionnalités avancées à travers sept systèmes de photométrie à fibre distincts.
LEGEND:
- Iso. = isosbestique
- Opto = optogénétique
- Ephys = Électrophysiologie
- EEG = électroencéphalogramme
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Photométrie bicolore facilement compatible avec l'optogénétique dans le rouge lointain. Idéale pour 1 à 2 animaux/sites. |
Pour UN animal en liberté, photométrie bicolore et sur 1 à 2 sites sur h/jours. Aucun artefact de rotation ! |
Sans câble photométrie pour les organismes en mouvement libre et interagissant animaux dans la même cage. |
Abordable et à haut débit photométrie pour multisite / multi-animaux expériences. |
Haut débit photométrie pour multisite / animal expériences, à l' optogénétique |
Pour UN animal avec trois sites ou plus photométrie sur h/jours, sans artefacts de mouvement. |
Pour tonique et relatif des changements dans de base, chez les animaux en liberté & létudes longitudinales. |
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Flexible: 405, 415, 425 et 440 nm |
Fixé: 405, 415, 425 ou 440 nm |
Fixé: 405 ou 415 nm |
Fixé: 405, 415, 425 ou 440 nm |
Fixé: 405, 415, 425 ou 440 nm |
Flexible: 405, 415, 425 et 440 nm |
N/D |
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Opto en fibre DIFFÉRENTE : 470 nm, 520 nm, 560 nm, 590 nm, 638 nm |
N/D |
Opto en fibre DIFFÉRENTE : 470 nm, 520 nm, 560 nm, 590 nm, 638 nm |
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1 - 25 Hz |
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Articulation rotative : ajouter Ephys / EEG |
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Articulation rotative : ajouter Ephys / EEG |
Articulation rotative : ajouter Ephys / EEG |
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Articulation rotative : ajouter Ephys / EEG |
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QUESTIONS COURANTES:
Quelle est la principale différence entre les systèmes BASIC et BUNDLE-IMAGING ?
Quelle est la principale différence entre les systèmes BASIC et BUNDLE-IMAGING ?
Le système de base et le système d'imagerie par faisceau sont principalement différenciés par leur type de détecteur, qui peut enregistrer le signal provenant d'un nombre différent de fibres :
BASIQUE :
- Utilise un photodétecteur (signal 1D)
- Max une fibre par mini cube
- Fréquence d'échantillonnage élevée (1000 Hz)
- Compatible avec Lock-In mode (division de fréquence)
- Compatible avec le mode entrelacé (division temporelle)
IMAGE DE GROUPE :
- Utilise une caméra CMOS (signal 2D)
- Image de plusieurs fibres simultanément
- NON compatible avec le mode de verrouillage
- Compatible avec le mode entrelacé (division temporelle)
Quel est le meilleur système pour la photométrie bicolore (+ isosbestique) avec optogénétique ?
Quel est le meilleur système pour la photométrie bicolore (+ isosbestique) avec optogénétique ?
Dans chaque catégorie de systèmes de photométrie par fibre optique, il existe des configurations spéciales qui s'accordent bien avec l'optogénétique à décalage vers le rouge :
- BASIC - vert et rouge + configuration opto
- Système d'imagerie par faisceau avec optogénétique ciblée - Support indépendant optogénétique multisite au sein du faisceau de fibres
- FluoPulse - 2 couleurs + opto
NOTE: Bien que les systèmes rotatifs intégrés puissent prendre en charge l'optogénétique, leurs configurations sont généralement plus limitées :
- RBFMC Il est uniquement possible d'associer vert et opto sur le même site.
- RFMC : ne prend en charge l'optogénétique que dans un différent site issu de la fibre photométrique.
Comment puis-je synchroniser un système de photométrie à fibre Doric avec d'autres systèmes comportementaux, d'optogénétique ou d'électrophysiologie ?
Comment puis-je synchroniser un système de photométrie à fibre Doric avec d'autres systèmes comportementaux, d'optogénétique ou d'électrophysiologie ?
Oui! Tout Systèmes doriques (avec des consoles doriques) La synchronisation peut être effectuée via des ports d'entrée/sortie numériques avec connecteurs BNC. Ces ports peuvent envoyer/recevoir des impulsions TTL (signaux numériques entre 0 et 5 V), où > 2.75 V = 1 et < 2 V = 0.
Toutes les consoles Doric possèdent au moins 4 ports d'entrée/sortie numériques (DIO). Et les nouvelles NC500 et BBC300 Il dispose de 8 ports par défaut, en plus d'une extension DB25 compatible avec un tableau de bord pour un total de trente-deux signaux numériques destinés à des expériences sur plusieurs animaux.
En plus de la gratuité Logiciel Doric Neuroscience Studio Les logiciels espions disposent de plusieurs modes spécialement conçus pour ce type de synchronisation :
- Mode de déclenchement principal - Configurez le système de photométrie comme un système esclave afin que, lorsque vous sélectionnez « Enregistrer », il attende de recevoir un signal numérique (TTL) de l'autre système avant de démarrer l'enregistrement. Cela permet aux deux systèmes de fonctionner simultanément. points de départ identiques.
- Sortie numérique - Mode carré : Envoyer une impulsion TTL à une fréquence spécifique pendant toute la durée (ou une partie) de l'enregistrement. Ceci peut être utilisé pour synchroniser une caméra comme Basler. FLIR BlackFly, ImagingSource, etc. qui prennent en charge le déclenchement par impulsion TTL.
Ainsi, grâce à ces modes, le système dorique peut être configuré soit comme esclave, soit comme maître lors de la synchronisation de deux systèmes.
NOTE: Le NC500 prend en charge Doric Behvaior et CamLoop il s'agit de caméras et d'un système d'acquisition pour l'électrophysiologie Intan.
Système de photométrie à fibre de base
Dorique Système de photométrie à fibre de base offre une solution flexible pour la surveillance de l'activité neuronale et de la dynamique des neurotransmetteurs chez les animaux en activité. Conçu autour d'un mini cube de fluorescence intégré, il combine l'excitation par LED, photodétecteurs à haute sensibilitéet des optiques de filtrage dans une configuration compacte. Choisissez parmi les configurations compatibles biocapteurs verts et rouges, En option isosbestique excitation et optogénétique Une stimulation adaptée à vos besoins expérimentaux.
Associé à la console Neuroscience 500 (NC500) et Logiciel Doric Neuroscience Studio Le logiciel simplifie le contrôle de l'excitation et l'enregistrement de la fluorescence, tandis que les articulations rotatives à fibre optique (en option) permettent de réaliser des expériences sur des animaux en liberté de mouvement. De plus, le support NC500 enregistrement simultané de 4 à 8 animauxCependant, contrairement au système d'imagerie par faisceau, l'ajout de chaque fibre optique nécessite son propre mini cube indépendant, Le prix varie donc en fonction du nombre de sites/animaux gérés simultanément.
Tous les systèmes de base sont désormais disponibles. modèles intégrés où la plupart des composants, tels que les LED, le pilote de LED, les composants optiques, les détecteurs et même le joint rotatif, sont intégrés dans un petit facteur de forme compactLes différents systèmes présentent différents niveaux d'intégration.
Les systèmes de photométrie à fibre optique de base peuvent fonctionner dans les deux modes suivants :
- verrouillage mode (division basée sur la fréquence)
- Entrelacé mode (division temporelle) utilisant le direct algorithmes de démodulation/désentrelacement en (gratuit) Logiciel Doric Neuroscience Studio logiciel.
Mini cubes fluorescents (FMC)
Avec validation sur une décennieLe système de photométrie à fibre optique de base est idéal pour enregistrer les signaux GFP, RFP et isosbestiques de 1 à 2 sites/animaux, avec la possibilité d'une extension ultérieure.
Dans les dernières générations, le photodétecteur est intégré directement au sein du mini-cube de fluorescence, offrant ainsi rapport signal/bruit plus élevé rapport par rapport à la version non intégrée. Un FMC enregistre un signal basé sur la GFP et/ou la RFP à partir d'une seule fibre optiqueIl est toutefois possible de combiner plusieurs cubes/étages d'entrée pour enregistrer à partir de plusieurs souris ou sites cérébraux (jusqu'à 4-8*) lors de l'utilisation du Console de neurosciences 500.
Mini cube fluorescent (FMC) sont désormais livrés avec un point isosbestique flexible, de sorte que la LED isosbestique intégrée puisse être remplacée par une LED de 405, 415, 425 ou 440 nm. De plus, les configurations à une et deux couleurs sont compatibles avec optogénétique simultanée décalée vers le rouge, sans diaphonie.
De plus, le système de base peut être combiné avec des joints rotatifs à queue de cochon (FRJ_1x1_PT, FRJ_2x2_PT & AFRJ_2x2_PT) pour des expériences à long terme et en liberté de mouvement.
Photométrie de base rotative à fibres
In Mini-cube de photométrie à fibre rotative (RFMC), jusqu'à deux mini-cubes de fluorescence sont intégrés directement sur les joints rotatifs. Cette conception unique supprime les artefacts de rotation Le système RFMC optimise le signal et minimise le nombre de connexions avant le photodétecteur. Par conséquent, il offre les avantages suivants : signal de meilleure qualité comparé à un système FMC de base associé à un joint rotatif externe, il est idéal pour les expériences de longue durée. plusieurs heures, voire des jours.
Le joint rotatif contient également un canal creux qui peut être utilisé pour l'administration de fluides, l'électrophysiologie/EEG ou l'optogénétique.
Photométrie par fibre sans fil
Le Système de photométrie par fibre optique sans fil (WiFP) contourne complètement problèmes d'enchevêtrement en éliminant le besoin de câbles à fibres optiques fixés à la tête de l'animal.
De plus, il s'agit de la seule solution permettant d'enregistrer les données de plusieurs animaux se déplaçant librement dans la même cage, ou pour les comportements perturbés par un système de contention. Actuellement, seule l'option 1 couleur + isosbestique est disponible. Par ailleurs, le WiFP est actuellement la seule solution de photométrie par fibre optique sans fil disponible sur le marché. signal de contrôle isosbestique.
Plusieurs étages d'entrée peuvent fonctionner simultanément, ce qui rend ce système particulièrement performant. idéal pour étudier les populations neuronales sous-jacentes aux comportements sociaux.
Systèmes de photométrie par fibres à imagerie de faisceaux
Contrairement aux systèmes de photométrie à fibres optiques de base, qui nécessitent un mini cube par site/animal, l'imagerie par faisceaux Systèmes de photométrie à fibre optique utiliser une caméra CMOS pour imager l'ensemble du faisceau de fibres. simultanémentLes systèmes de photométrie par fibres optiques à imagerie de faisceaux sont idéaux pour l'enregistrement de 1 ou 2 couleurs. provenant de plusieurs animaux ou régions cérébrales (1-19 fibres), toutes à un prix raisonnable.
Tous les systèmes d'imagerie de faisceaux sont disponibles avec Configurations bicolores (plus isosbestique) et les trois excitations sont entrelacées dans le temps (c'est-à-dire que le mode de verrouillage est pas (disponibles). Les trois LED excitent l'ensemble du faisceau de fibres (pas de réglage de puissance indépendant), et le signal photométrique est ensuite échantillonné à 20-100 Hz en fonction du champ de vision de la caméra et du nombre de fibres imagées simultanément.
Mini cube de fluorescence à imagerie de faisceaux (BFMC)
Le BFMC-G3 est entièrement intégré, Branchez & jouez conception (avec caméra CMOS, LED, pilote de LED et console dans un seul appareil), simplifiant considérablement configuration et dépannageCependant, ce système n'est pas compatible avec l'optogénétique simultanée dans la même fibre que celle utilisée pour la mesure par photométrie sur fibre.
Imagerie de faisceaux avec optogénétique ciblée (BFTO)
Le Système BFTO est spécialement conçu pour bicolore, Photométrie par fibre multisite avec optogénétique cibléeLe terme « ciblé » fait référence à un contrôle optogénétique indépendant et multisite, où plusieurs sources lumineuses sont connectées à différentes fibres optiques au sein du faisceau de fibres.
Le BFTO est particulièrement bien adapté aux neurosciences des circuits car il permet Enregistrement simultané de plusieurs régions cérébrales tout en délivrant une stimulation optogénétique ciblée à des nœuds spécifiques au sein du réseauCette combinaison permet de mesurer la façon dont l'activité se propage à travers des circuits interconnectés, de déterminer les relations causales entre les régions et d'analyser le rôle fonctionnel de voies définies pendant le comportement, le tout au cours d'une même expérience.
De plus, l'approche optogénétique ciblée est également idéale pour optogénétique multi-animaux en boucle fermée, où chaque animal déclenche la stimulation en fonction de son état comportemental unique.
Grâce à ses capacités bicolores, multisites et optogénétiques, ce système offre une flexibilité maximale pour les expériences courantes en neurosciences.
Mini cube de fluorescence à imagerie de faisceaux rotatifs (RBFMC)
Le RBFMC est la seule solution pour joints rotatifs photométrie de fibres multisite expériences (1 couleur ou 2 couleurs + isosbestique) et peuvent même être combinées avec l'électrophysiologie/EEG.
Cette solution est conçue pour uniqueanimal se déplaçant librement et pour des expériences d'une durée de plusieurs heures/joursLe détecteur CMOS est intégré directement sur l'articulation rotative. SUPPRESSION DES artefacts liés à la rotationDe plus, la version 2025 est désormais équipée d'un conception isosbestique flexible, pour permettre la commutation entre 405, 415, 425 et 440 nm pour différents biocapteurs.
Le RBFMC comprend également deux autres éléments différents. capacités optogénétiques : (1) une configuration pour GCaMP et opsine rouge simultanés dans toutes les fibres (simultanément) et/ou (2) et une mise à niveau pour s'adapter à une diode laser externe sur le rotor à joint rotatif, pour une stimulation optogénétique indépendante sur un site de photométrie non fibreux.
Le système RBFMC est fourni par défaut avec électrique intégrée Connecteurs pour Intan, Neuropixel et autres enregistrements électrophysiologiques. Ce système RBFMC constitue la solution idéale pour combiner mesures photométriques et électriques multisites sur fibre optique chez les mêmes animaux se déplaçant librement.
* L'optogénétique simultanée sur les sites photochimiques de la fibre est uniquement Disponible pour la configuration à une couleur ; pour la configuration à deux couleurs, l’optogénétique peut être ajoutée, mais sur un Site non photométrique.
Photométrie de la durée de vie de fluorescence des fibres (FLiP)
La toute dernière innovation en photométrie des fibres ! La photométrie des fibres par durée de vie de fluorescence mesure picoseconde changements dans la durée de vie de la fluorescence d'indicateurs plutôt que d'intensité du signal, fournissant une lecture qui est largement indépendant du niveau d'expression du biocapteur, des artefacts de mouvement, du photoblanchiment, de la puissance d'excitation variable.
Système FluoPulse™ - Photométrie de fluorescence par fibre optique
Cette approche est particulièrement idéale pour quantifier les changements toniques, relatifs à la ligne de base et la dynamique des états lents de neurotransmetteurs, métabolites ou kinases chez des animaux en liberté. Les mesures de durée de vie de la fluorescence sont également optimisées pour études longitudinales, réduisant ainsi la variation entre les animaux et au sein d'un même animal.
Le système FluoPulse prend en charge jusqu'à deux canaux simultanément, soit : à double site, à double animal ou à double couleur.
REMARQUE : La méthode FLiP nécessite des biocapteurs spéciaux qui présentent une variation significative de durée de vie inférieure à 100 picosecondes. Les biocapteurs classiques comme GCaMP ne sont donc pas compatibles. Pour une liste complète des biocapteurs de durée de vie de fluorescence (et ceux déjà validés avec notre système), consultez la documentation. Onglet Biosenseur ICI. (en anglais seulement).
Qu'est-ce que la durée de vie de la fluorescence ?
Qu'est-ce que la durée de vie de la fluorescence ?
La durée de vie de fluorescence correspond au temps moyen pendant lequel un fluorophore demeure dans son état excité avant d'émettre un photon, généralement de l'ordre de la nanoseconde. Il s'agit d'une propriété intrinsèque du fluorophore qui dépend de son environnement moléculaire local plutôt que de sa concentration ou de l'intensité de son excitation.
Comment mesure-t-on la durée de vie de la fluorescence ?
Comment mesure-t-on la durée de vie de la fluorescence ?
Le Doric Le système FluoPulse utilise un nouveau Méthodologie d'échantillonnage par impulsions pour mesurer la durée de vie de la fluorescence. Contrairement à d'autres approches de comptage de photons uniques (TCSPC), elle collecte plusieurs photons à chaque mesure.
Des types particuliers de biocapteurs sont-ils nécessaires pour mesurer la durée de vie de la fluorescence ?
Des types particuliers de biocapteurs sont-ils nécessaires pour mesurer la durée de vie de la fluorescence ?
Oui. Pour mesurer la durée de vie de la fluorescence, il faut utiliser des biocapteurs spécialement conçus qui présentent une variation mesurable de la durée de vie de la fluorescence > 50 ps.
Les biocapteurs d'intensité classiques, comme GCaMP, ne sont PAS compatibles, car la variation de durée de vie est minime entre les conformations liée et non liée.
Pour une liste complète des biocapteurs de durée de vie de fluorescence (et ceux déjà validés avec notre système), consultez le Onglet Biosenseur ICI. (en anglais seulement).
Joints rotatifs / collecteurs
Empêcher les fibres optiques et les câbles de se tordre et de perturber les comportements naturels des animaux lors d'expériences en liberté.
Pourquoi les joints rotatifs « à queue de cochon » sont-ils essentiels pour la photométrie des fibres optiques ?
Pourquoi les joints rotatifs « à queue de cochon » sont-ils essentiels pour la photométrie des fibres optiques ?
L'expression « joint rotatif à queue de cochon » fait référence à des fibres intégrées au joint rotatif qui ne peuvent pas être détachées.
Ces éléments garantissent que les fibres supérieures et inférieures sont bien alignés et significativement réduire les fluctuations de fluorescence qui se produisent lors des rotations dans les enregistrements de photométrie par fibre optique.
Pour éliminer complètement les artefacts liés à la rotation
***AVERTISSEMENT : L’utilisation d’un joint rotatif sans queue de cochon peut entraîner d’importants artefacts de mouvement dans le signal de photométrie par fibre optique.***
Définition de la nomenclature des joints rotatifs 1x1 et 2x2
Définition de la nomenclature des joints rotatifs 1x1 et 2x2
# x # fait référence à la division des canaux optiques au-dessus et en dessous du joint rotatif.
- MONITORING = canal optique unique
- MONITORING = deux indépendant canaux optiques
Que faire si je veux un joint rotatif pour plus de deux sites optiques ?
Existe-t-il un joint rotatif pour PLUS DE DEUX sites optiques indépendants ?
Existe-t-il un joint rotatif pour PLUS DE DEUX sites optiques indépendants ?
Malheureusement, il n'y en a pas externe Joint rotatif pouvant être facilement ajouté à un système de photométrie à fibre optique existant.
Cependant, nous avons conçu le Système de photométrie par imagerie de faisceaux rotatifs Conçu spécifiquement pour répondre à ce besoin, ce système est le seul Doric solution pour 3+ indépendant Canal optique avec joint rotatif.
Cette solution peut enregistrer jusqu'à 7 fibres de 400 µm ou 19 fibres de 200 µm sur un animal en liberté de mouvement.
La caméra CMOS est fixée à l'articulation rotative et tourne avec l'animal, éliminant ainsi complètement les artefacts liés à la rotation.
Quelle est la différence entre les articulations rotatives « passives » et « assistées » ?
Quelle est la différence entre les articulations rotatives « passives » et « assistées » ?
Câbles à fibre optique
A cordon de brassage à fibre optique est une fibre optique flexible utilisée pour la transmission bidirectionnelle transmettre la lumière entre le système et l'animal avec une perte minimale. Plus précisément, la fibre est utilisée pour acheminer la lumière d'excitation des sources lumineuses vers la fibre optique implantée (canule) et renvoie la fluorescence émise par le biocapteur au détecteur.
Pour les applications de photométrie par fibre optique, nous recommandons faible autofluorescence et flexible cordons de brassage à fibres optiques avec une ouverture numérique élevée (N / A):
- Silice/silice Les cordons de brassage (0.37 NA) offrent une autofluorescence très faible et une grande durabilité, fournissant des signaux plus propres et une stabilité à long terme, mais avec une efficacité de transmission et de collecte de lumière plus faible (c'est-à-dire NA plus faible).
- silice/polymère Les cordons de brassage (0.57 NA) améliorent l'excitation et la collecte de fluorescence grâce à une ouverture numérique plus élevée, au prix d'une durabilité réduite et d'une autofluorescence modérément plus élevée (doit photoblanchi hebdomadaire).
Quelle ouverture numérique (NA) de la fibre est recommandée pour la photométrie par fibre optique ?
Quelle ouverture numérique (NA) de la fibre est recommandée pour la photométrie par fibre optique ?
NOUS AVONS RECOMMANDÉ DIFFÉRENTS CÂBLES DE CONNEXION POUR DIFFÉRENTS SYSTÈMES :
- Pour Systèmes de base, l'optique supporte jusqu'à 0.5 NA et donc, Silice/Polymère (0.57 NA) Le câble de raccordement permettra une meilleure réception du signal.
- Pour Imagerie de faisceau systèmes, nous recommandons Silice/silice (0.37 NA) Pour sa durabilité, afin d'éviter de remplacer trop souvent les cordons de brassage multifibres (plus coûteux). De plus, l'optique du système d'imagerie de faisceaux est limitée à une ouverture numérique (NA) de 0.4 ; une NA plus élevée (comme 0.57) n'apporte donc pas d'avantage significatif.
- Pour la Système FluoPulse™, nous recommandons Silice/Silice (0.37 NA), Les mesures de durée de vie sont particulièrement sensibles à l'autofluorescence de la fibre, ce qui peut biaiser la mesure. Ainsi, la faible autofluorescence de Silice / Silice La fibre optique offre le meilleur rapport signal/bruit pour les mesures de durée de vie de la fluorescence.
Quel diamètre de fibre est recommandé pour la photométrie par fibre optique ?
Quel diamètre de fibre est recommandé pour la photométrie par fibre optique ?
Tous Doric Le système de photométrie par fibre optique accepte les fibres de 200 μm et de 400 μm. Chaque diamètre présente des avantages et des inconvénients.
Un noyau plus petit permet à la puissance optique de pénétrer plus profondément dans le tissu, mais illumine moins de cellules et recueille moins de signaux. Un noyau plus grand illumine
Plus de cellules, mais pénètre moins profondément.
IMPORTANT: N'oubliez pas de faire correspondre le diamètre de la fibre optique du cordon de brassage au diamètre de la fibre à l'intérieur de la canule !
Quels connecteurs de fibre optique sont recommandés pour la photométrie par fibre optique ?
Quels connecteurs de fibre optique sont recommandés pour la photométrie par fibre optique ?
Il est important de adapter les connecteurs de fibre au système/joint rotatif approprié d'un côté et à la virole de canule appropriée de l'autre.
CONNEXION AU SYSTÈME :
- Système de baseConnecteur FC/PC
- Systèmes d'imagerie groupée : Connecteur SMA (sauf pour BFTO, qui nécessite un connecteur HD)
- Système FluoPulse : Connecteur FCA (FC/PC coudé) pour empêcher la rétropropagation de la lumière qui peut endommager le laser au fil du temps.
CONNEXION À ARTICULATION ROTATIVE :
- La plupart des articulations rotatives doriques : Connecteur FC/PC
- AFRJ_2x2_PT or AHRJ_2x2_PT: Connecteur CM3
CONNEXION DE LA CANNULE :
- Souris : MF1.25 (la plus légère) ou MF2.5
- Rats : MF2.5 ou SM3 (connexion plus robuste)
REMARQUE : Il existe des connexions spécialisées pour les canules à double et multifibres optiques.
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